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易游体育:病原生物学专业论文)二乙烯亚胺对脊髓灰质炎病毒Sabin株灭活效果以及灭活疫苗添加佐剂的效果观察来源:易游体育    发布时间:2026-06-19 11:56:03

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  前言……………………………………………………………………………………4 日U舌……………………………………………………………………………………4

  一材料和方法………………………………………………………………………..5

  二结果和分析…………………………………………………………………………10

  四小结……………………………………………………………………………….18

  参考文献………………………………………………………………………………19

  第二部分Sabin株脊髓灰质炎病毒灭活疫苗(SabiIlDV)与佐剂配伍的动物

  前言…………………………………………………………………………………..21 刖舌…………………………………………………………………………………..2l

  一材料和方法……………………………………………………………………….23

  二结果和分析……………………………………………………………………….30

  三讨论……………………………………………………………………………….45

  四小结……………………………………………………………………………….48

  参考文献………………………………………………………………………………49

  论文综述………………………………………………………………………………5l

  附录……………………………………………………………………………………59

  致谢……………………………………………………………………………………61

  研究生简历…………………………………………………………………………..62

  随着全球消灭脊髓灰质炎(脊灰)目标的临近,疫苗衍生脊灰病毒(VkciIle.

  derivedPoliovinIs,VDPV)的流行、疫苗相关麻痹型病例(V如cineAssociatedP删如c

  Poliomyelitis,Ⅵ心P)的发生等对无脊灰状态成果的巩固威胁很大。在消灭脊灰的

  最后阶段,应尽快消灭脊灰野毒株,并使用脊髓灰质炎灭活疫苗(Inactivated

  poliovinlSvaccine,IPV)替代目前普遍的使用的脊髓灰质炎减毒活疫苗(Oralpoliovims

  vaCcine,OPV)来维持无脊灰状态,消除自然界的活病毒。考虑到疫苗生产的生物

  安全性等因素,WHO鼓励研制Sabin株脊髓灰质炎灭活疫苗(SabillIPV)。

  本论文旨在针对SabinII型病毒,寻找一种与传统灭活剂一甲醛相比较,对病

  毒的抗原破坏更小,且更安全的病毒灭活剂;并进一步探索SabinIPV中添加佐剂

  本研究第一部分进行了二乙烯亚胺(BEI)对脊髓灰质炎病毒II型Sabin株的灭

  活效果观察。通过在不一样的温度下采用4种浓度的BEI及甲醛对脊髓灰质炎病毒II型

  Sabin株进行灭活,测定活病毒含量和D抗原含量,并进行病毒灭活验证试验。结

  果在37℃条件下,0.002mol/L浓度的BEI能在48h内完全灭活病毒,灭活后的病

  毒液D抗原含量回收率为90.6%,明显高于甲醛灭活的回收率(60.6%)。经验证灭

  活彻底,无活病毒存在。BEI对脊髓灰质炎病毒II型SabiIl株的D抗原破坏小,能

  本研究的第二部分四组不同剂量的SabillIPV疫苗与佐剂Al(OH)3配伍后免疫

  Wi咖大鼠,通过检验测试各组大鼠免疫后血清中和抗体水平、特异性IFN吖的产生情

  况以及免疫后各组大鼠CD3/CD4/CD8分子表达的差异,以确定使用Al(OH)3佐剂

  时SabinIPV的最适剂量。通过微量中和实验检测SabiIl株脊髓灰质炎特异性中和

  抗体发现,疫苗不同剂量产生的中和抗体GMT水平基本是抗原含量高的组高于抗

  原含量低的组,添加Al(OH)3佐剂组的中和抗体水平也是高于未添加佐剂组的中和

  抗体水平。ELISPOT测定针对Sabin株脊髓灰质炎病毒的特异性IFN吖的结果显示,

  添加佐剂实验组产生的斑点要多于未添加佐剂组,2.①实验组三个型别所产生的斑

  点数都最多。流式细胞仪检测各组大鼠CD3/CD4/CD8分子表达差异的结果显示,

  1.①实验组CD3+CD4+/CD3+CD8+比值最高。综上所述,添加佐剂对三个型别的Sabin

  IPV的免疫反应有增强的效果;综合实验结果可认为I型采用30DU/dose,II型采

  with砒enuaLted vinls, Sabin straill,in

  seekstoaddressSabinII vims,tolookforabetterinactivator,whichhas

  obseⅣemeinactiVatione彘ctofBEIonSabinsn面n

  O.002moⅥ。concenn砒ion ofBEIat 37℃for48hour’s incubation.The

  si鲥fic觚tlli曲er恤n60.6%recoVery晰thfomaldehyde.

  polioVims,indicatinga伊eaterprotective

  aIldWistarratswereinununized.Wedetectedsemm

  CD3+CD4+/CD3+CD8+ratiois themaxim啪.In

  Keywords:PolioVims;BinaryemyleIlilnine;inactiVation;Sabmsn址n;adjuVant

  能侵袭任何年龄人群,但主要是3岁以下的儿童(占所有病例的50%),造成肢体

  不可逆转的麻痹甚至死亡。20世纪40~50年代,工业化国家大规模的脊髓灰质炎流

  行,每年造成数千万儿童麻痹,一度引起恐慌。20世纪50年代末60年代初,有效

  的疫苗应用之后不久,脊髓灰质炎得到了控制。脊髓灰质炎作为一个重要的卫生问

  题为发展中国家所认识,经历了稍长时间。20世纪70年代的脊髓灰质炎减毒活疫

  苗(OPV)常规免疫计划的一部分帮助许多发展中国家控制这种疾病。1988年第

  41界世界卫生大会通过了到2000年全球消灭脊髓灰质炎的决议后,全球消灭脊灰

  已取得了很大进展。到2005年,脊灰的发病数比1988年减少了99%,世界卫生组

  织美洲区、西太平洋区、欧洲区先后实现无脊灰,剩下主要在南亚和撒哈拉周边的

  尽管口服脊髓灰质炎减毒活疫苗(Oralpoliovimsvaccine,0PV)为控制脊灰的

  发病和流行做出了巨大贡献,但随着全球消灭脊灰任务的逐步实现,OPV的缺点也

  日益凸现,例如OPV热稳定性较差,在热带地区效力较低,OPV可引起疫苗相关麻

  paralyticpoliomyelitis,VAPP)病例和疫苗衍生脊灰病

  poliovimses,VDPV)病例的风险,以及免疫抑制者长期排毒、全国

  强化免疫成本高难度大等,另外只要使用OPV就会有病毒循环,难以发现野病毒循

  环。因此OPV的安全性在消灭脊灰的最后阶段愈来愈受到大家的广泛关注【2】。使用

  灭活脊髓灰质炎疫苗(II瑚tivatedpoliovinlsvaCcine,IPV)能够尽可能的防止上述风险,也只有

  使用IPV才能最终根除脊髓灰质炎。目前使用的IPV已与过去Salk研发的IPV有很大

  的不同,20世纪70年代,丹麦和法国的科学家发现了细胞培养、灭活、收获高浓度

  的病毒。现今的IPV免疫原性更好,降低粪便排毒量和减少排毒时间,可以和DTP、

  乙型肝炎疫苗、Hib等制成联合疫苗,减少免疫次数。另外从其他几个国家使用IPV的经

  验来看,如1977年美国医学会推荐成人使用IPV,1988年推荐使用IPV联合疫苗,1995

  年建议儿童转为IPV,1997年推荐使用IPV/OPV序贯程序,1999年推荐使用序贯程

  序或全程IPV程序,2000年美国建议使用全程IPV。美国在使用IPV前每年VAPP发生

  8~10例,转为序贯程序后,每年发生5例左右,转为全程IPV后,不再有VAPP发生。

  2008年全球有35个国家(包括部分发展中国家,如墨西哥等)使用全程IPV【3】。

  目前全球有6个厂商在生产IPV,但生产所使用的毒种均为野毒株。在全世界消

  灭脊髓灰质炎后,用野毒株生产IPV,生物安全4级的生产条件亦非绝对安全。对于

  疫苗生产厂商也难以达到如此严格的生物安全要求,因而WHO鼓励新疫苗厂家研发

  使用减毒株Sabhl株生产的脊髓灰质炎病毒灭活疫苗(SabiIlIPv)。但由于以下两个

  原因SabinIPV的研发面临巨大困难:一是其免疫原性弱于野毒株制备的IPV;二是

  sabin毒株灭活后,疫苗的抗原性会发生明显的变化,不同于野毒株。针对sabinIPV的第

  一个问题,主要是在疫苗制备过程中的灭活环节免疫原性损失较大。在三个型别的

  病毒中又以II型病毒的免疫原性在灭活时破坏更明显。因此寻找一种比传统疫苗

  基结合形成羟甲基衍生物或二羟甲基衍生物,后者再与酰胺发生交联反应,使病毒

  蛋白质变性,进而达到灭活病毒的目的。现今使用的口V也是用甲醛来进行灭活,

  而早在1956~1958年就有研究者证明甲醛在灭活脊灰病毒时的反应不是一个线性的

  (foot.and.moutll disease)病毒时得出。另一类灭活剂二乙烯亚胺(Bi彻n,

  ethylenimine,BEI)属氮丙啶(A2iridine)类化合物,是由2.溴乙胺氢溴酸盐

  核酸代谢,破坏病毒核酸达到灭活病毒的目的,对某些病毒的抗原影响小。BEI灭

  活病毒的过程是个线性的灭活过程,这在早年研究FMD疫苗时得到证明【51。近年

  来BEI用于灭活口蹄疫病毒,羊蓝舌病毒【6】’鸡法氏囊病病毒m,流感病毒【81等研

  究,都显示BEI有较好的灭活效果。因此本研究以甲醛作对照,对不同浓度的BEI

  在不同温度下,灭活脊髓灰质炎病毒II型Sabin株的效果进行观察,以寻找SabinIPV

  脊髓灰质炎病毒II型Sabin株SO+2接种Vero细胞,经37℃培养,出现细胞

  病变效应(Cytopathicef.fect,CPE)“+++)后,.20℃冻融3次,12000r/min离

  用2.溴乙胺氢溴酸盐(BEA)与O.2N的NaOH溶液在37℃下水浴lh(每隔

  15.20min摇匀一次)配制成所需浓度的BEI灭活液‘51,4℃存放备用。

  在制备好的病毒液中分别加入终浓度为O.002,O.00l,0.0005,0.00025moⅥ。

  的BEI和O.0925m幽m的甲醛,之后将病毒液分别放置于37℃,33℃,28℃,25℃

  培养箱。并于第1天至第12天每天取样,加入阻断剂终止灭活(每毫升病毒液加

  入2.2%亚硫酸氢钠0.14叫中和甲醛;加入BEI使用量10%的1mo儿硫代硫酸钠中

  1)用稀释液将不同时间段取样的灭活样品进行10倍系列稀释至10~,稀释后将每

  2)使用对数生长期H印.2细胞,经胰酶消化后加入适量细胞生长液,吹打混匀后

  进行细胞计数。再用细胞生长液将细胞悬液稀释至所需浓度(约为100,000个

  3)向细胞培养板中加入100pl的Hep.2细胞悬液,设正常细胞对照,放置35℃,

  体,可作为IPV效力体外测定的指标,它与体内免疫原性有较好的一致关系,故用

  ELISA方法对SabinIPV疫苗D抗原的含量进行测定,既可以测出疫苗的抗原性,

  采用牛抗脊髓灰质炎病毒IgG作为捕获抗体(一抗),兔抗脊髓灰质炎病毒IgG

  作为检测抗体(二抗),使用鼠抗兔IgG.HRP作为酶标抗体,用TMB作为底物。

  显色后用2N的硫酸终止反应,在酶标仪上用450/630姗检验测试吸收值。样品通过其

  1)包被液:磷酸盐缓冲液(PBS),10nunol/L,pH7.2.7.4

  5)TMB贮备液:6m咖1,TMB30mg溶于5ml无水乙醇中,存放于棕色瓶中。

  6)柠檬酸.柠檬酸钠缓冲液(TMB稀释液,pH5.0,O.1mol/L)柠檬酸钠18.689,

  7)显色液:柠檬酸.柠檬酸钠缓冲液+1%TMB贮备液+O.02%的30%H202

  9)捕捉抗体(一抗):II型经纯化获得的牛抗Sabin-PolioIgG(本室制备)。

  10)检测抗体(二抗):II型经纯化获得的兔抗Sabill.PolioIgG(本室制备)。

  11)D抗原参考品:Sabin株脊髓灰质炎灭活疫苗效力试验参考品批号:200401,

  1)包板:用PBS将II型一抗按特殊的比例稀释后,加入酶标板。每孔100pl,Al孔

  2)封闭:将酶标板中的包被液甩干,洗板3次,每次加洗板液200Ul。加封闭液每

  3)加抗原:甩干封闭液,洗板3次。用稀释液将参考品和样品稀释至适宜浓度(参

  考品按8、4、2、l、0.5、0.25DU/ml作六个稀释度),加入酶标板,每孔100IJl。

  4)加二抗:洗板3次,用稀释液将II型二抗稀释到适宜浓度加入酶标板,每孔looUl,

  5)加酶标抗体:洗板4次,用稀释液将酶标抗体稀释到适宜浓度加入酶标板,每

  6)加TMB.底物:每孔(含A1孔)加入TMB使用液loolJl,37℃避光10分钟。

  8)检测:酶标仪双波长(检测波长45011In,参考波长630啪)测吸收值,记录各

  测OD值一阴性对照平均值;将参考品的6个稀释度的D抗原含量作为横坐标,对

  应的平均OD值为纵坐标,绘制标准曲线。根据样品各个稀释度的平均OD值对照

  采用细胞培养法,灭活终止时从每一病毒液中取样。每毫升病毒液加入2.2%亚

  硫酸氢钠0.14Inl中和甲醛后,将样品分做两份接种到H印.2细胞单层物上。每lml

  样品至少接种3cm2的培养面积。留2份细胞不接种样品作为对照,接种样品的细

  胞于36士1℃培养观察3周,称为原始培养。分别于14天和21天取原始培养的细胞

  培养上清液传代,传代培养物继续培养14天。原始培养结束时,每瓶检查残余活

  病毒的原始培养物加入100lgCCID5加lII型病毒液1IIll进行攻击,需产生特异性病

  2)原始培养,将生长成单层的H印.2细胞用洗涤液洗细胞面,以去除P01ioviruS抑

  3)将取样样品接种到细胞上,补加M199维持液,置36士1℃培养,设正常细胞对

  4)培养3周,显微镜下观察细胞病变,于第14和21天由每一细胞培养瓶中分别

  5)3周观察期结束时,进行Poliovims敏感性试验,每瓶加入loolgCCID5(加11同型

  6)再培养,由每原始瓶中分别收集14天上清液接种到新的己生长成单层的细胞培